МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ
ДЕПАРТАМЕНТ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУКИ И КАДРОВ
БЕЛОРУССКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ
АКАДЕМИЯ
Кафедра сельскохозяйственной биотехнологии и экологии
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ
ЭКОТОКСИКОЛОГИЯ
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ К ЛАБОРАТОРНО-ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ
Для студентов специальности 1-33 01 06 –экология сельского
хозяйства; специализации 1-33 01 06 01 – сельскохозяйственная
радиология
Горки 2003
МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ
ДЕПАРТАМЕНТ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУКИ И КАДРОВ
БЕЛОРУССКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ
Кафедра сельскохозяйственной биотехнологии и экологии
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ
ЭКОТОКСИКОЛОГИЯ
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ К ЛАБОРАТОРНО-ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ
Для студентов специальности 1-33 01 06 –экология сельского
хозяйства; специализации 1-33 01 06 01 – сельскохозяйственная
радиология
Горки 2003
Одобрено методической комиссией агроэкологического факультета 06.06.2002.
Составили Т. В. НИКОНОВИЧ, А. В. ЩУР.
СОДЕРЖАНИЕ
Р а б о т а 1. Воздействие солей тяжелых металлов на клетки растений. . . . . . . . . . . . . 3
Р а б о т а 2. Приготовление селективных питательных сред для выявления индиви-
дуальных реакций организмов на токсиканты . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .6
Р а б о т а 3. Влияние токсических веществ на микроорганизмы. Токсины микроорга-низмов . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7
Р а б о т а 4. Особенности регенерации растений in vitro на токсинсодержащих суб-
стратах. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9
Р а б о т а 5. Морфологические особенности воздействия токсикантов на растения
in vivo. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10
Р а б о т а 6. Динамика популяции дождевых червей при содержании токсических
веществ в субстрате. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ... . . . . .. . . . . .. . . . .. . . . . . . . . . . . .. 13
Р а б о т а 7. Воздействие токсических веществ на теплокровные организмы. . . .. . . . 14 Р а б о т а 8. Воздействие алкалоидов на теплокровные организмы.16
Р а б о т а 9.Экспериментальная затравка лабораторных мышей алкалоидами . . . .. . 18
Литература. . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ... .. . . . . . 19
УДК 573.6:633/635(072)
Сельскохозяйственная экотоксикология: Методические указания/ Белорусская государственная сельскохозяйственная академия; Сост. Т. В. Н и к о н о в и ч, А. В. Щ у р . Горки, 2003. 20 с.
Приведены методические указания к лабораторно-практическим занятиям в соответствии с программой по сельскохозяйственной экотоксикологии
Для студентов специальности 1-33 0106 – экология сельского хозяйства; специализации 1-33 01 06 01 – сельскохозяйственная радиология агроэкологического факультета
Таблиц 8 . Библиогр.7.
Рецензенты: доктор биол. наук, профессор, чл.-корр. ААН РБ А. В. Кильчевский , доцент Н. В. Лазаревич.
Работа 1. Воздействие солей тяжелых металлов
на клетки растений
Материалы и оборудование: микроскопы с осветителями, аналитические весы, препаровальные иглы, скальпели, предметные и покровные стекла, пипетки, соли тяжелых металлов, луковица, дистиллированная вода, колбы на 100 мл, мерные цилиндры на 50 мл, спирт, халаты, маркеры.
Биохимические и физиологические особенности миграции тя-
желых металлов в растительной клетке. Поглощённые тяжёлые металлы инактивируются в растительной клетке с помощью следующих механизмов:
1) образование нерастворимых органических комплексов;
2) внутриклеточное связывание с органическими веществами в виде прочных комплексов нерастворимых, растворимых, физиологически малоактивных, а также со специфически индуцированными веществами;
3) образование нерастворимых неорганических соединений металлов;
4) связывание металлов в цитоплазме со специфически индуцированными веществами.
В клетке наблюдается отложение частиц, содержащих металлы в виде фосфатов, силикатов, сульфитов. Нерастворимые соединения меди обнаружены на поверхности хлоропластов и в цитоплазме клеток листьев шпината при токсических концентрациях меди в среде. Труднорастворимые микрокристаллические цинксодержащие частицы были найдены в клетках ризодерма и перицикла корней лука. Свинец в виде плотных гранул обнаруживают с помощью электронной микрорадиографии в митохондриях и ядре. Кристаллы свинца видны в фазово-контрастном микроскопе на поверхности корня. Внутри корня многочисленные кристаллы свинца локализируются в клеточной стенке, они образуются не только в корнях, но и в листьях. Свинец находят в электронно-плотных гранулах в пузырьках диктиосом, которым приписывается функция выведения и кристаллизации токсических веществ. Наличием гранул свинца в клетке можно объяснить невысокую токсичность его для растений. Образование неорганических частиц, гранул в клетках рассматривается как длительно действующая система детоксикации, однако оказалось, что иногда они могут быть источником металла. В настоящее время изучены механизмы осаждения неорганических соединений меди, свинца, цинка. Этот список можно расширить, так как для живых клеток во внутриклеточных гранулах найдены другие металлы.
Образование нерастворимых органических комплексов. Этот механизм широко распространён в клеточных стенках, особенно в корнях, где аккумулируется основная часть поглощённых тяжёлых металлов. Доказано усиленное накопление металлов в клеточных стенках корней растений устойчивых популяций. Тяжёлые металлы связываются с пектиновыми веществами клеточной оболочки с образованием пектатов. Свинец связывается полисахаридами клеточной оболочки. В клеточной стенке листьев находится 8 %, а в клеточной стенке корней 14 % общего содержания кадмия. Свинец в клетке в основном связан с клеточными стенками и не извлекается большинством растворителей. У растений устойчивого к свинцу клона он откладывался в клеточных стенках и не был обнаружен в цитоплазме, органоидах и вакуолях. Для свинца, кадмия связывание клеточными стенками является эффективным механизмом устойчивости. Селективность клеточных стенок крайне мала. Барьерные функции клеточных стенок в растительных клетках существенны, но этим не исчерпываются все механизмы устойчивости.Образование растворимых слабодиссоциирующих комплексов.
Металлы могут связываться с цистеиновыми и гистидиновыми боковыми цепями белков, пуринов, порфиринов. Медь может легко взаимодействовать с белками, нуклеотидами и полинуклеотидами. Медь и кадмий реагируют с S– H- группами; у цинка большее сродство с карбонильными группами.
Связывание металлов в цитоплазме с механически индуцированными веществами. Последние данные свидетельствуют об индукции синтеза специфических металлосвязывающих белков и пептидов, богатых цистеином, в условиях нагрузки тяжёлыми металлами. Растворимые белки с необычайно высоким содержанием серы найдены в сосудистых растениях. Эти белки обладают способностью синтезироваться в организме под влиянием высокой концентрации тяжёлых металлов.
In vitro эти белки связывают многие тяжелые металлы. In vivo обнаружены только кадмий, цинк, медь, ртуть. Свинец в клетках находится в основном в ионной форме или неспецифически связан с белками и лишь незначительная часть его была найдена в комплексе с низкомолекулярным белком. Неизвестные ранее пептиды, названные фитохелатинами, были выделены из суспензионной культуры при повышенном уровне кадмия в среде. Эти маленькие, богатые цистеином пептиды участвуют в связывании, обезвреживании и обмене ионов кадмия, цинка, меди, свинца, ртути. Образование фитохелатинов показано при экспонировании с кадмием суспензионной культуры клеток табака, томата, дурмана. Существует мнение, что металлотионеин-подобные белки в ряде высших растений являются в действительности фитохелатинами. Физиологические функции фитохелатинов в растениях изучены недостаточно. В обычных условиях они находятся в клетке в незначительном количестве и могут быть донорами металлов для ферментов. При повышенном уровне тяжёлых металлов в клетке индуцируется синтез этих белков, они выводят избыток металла из обмена и поддерживают ионный гомеостаз. При медленной нагрузке тяжёлые металлы менее токсичны, чем при ударной дозе, когда не успевают синтезироваться фитохелатины. В устойчивых организмах фитохелатины образуются быстрее, чем в неустойчивых. Полагают, что повышенная металлоустойчивость связана с амплификацией гена, ответственного за синтез белка. Ещё одним важным аспектом металлоустойчивости является изменение метаболизма за счёт изменения структуры биологически активных белков.
Ход работы.
1. Приготовить растворы солей тяжелых металлов в различных концентрациях.
2. Подготовить микропрепараты чешуи лука.
3. Обработать препараты растворами солей тяжелых металлов.
4. Посмотреть происходящие изменения в клетках лука.
5. Зарисовать наблюдаемые эффекты воздействия солей тяжелых металлов.
6. На просмотренном препарате сменить раствор соли тяжелых металлов на дистиллированную воду.
7. Зарисовать происходящие изменения в препарате, заполнить таблицу 1.
8. Сделать выводы о воздействии тяжелых металлов в различных концентрациях на клетки Alium cepa.
Т а б л и ц а.1. Воздействие солей тяжелых металлов в различных концентрациях на клетки лука| Соль | Концентрация | Воздействие тяжелых металлов |
Работа 2.Приготовление селективных питательных сред для выявления индивидуальных реакций живых организмов на токсиканты
Материалы и оборудование: колбы, стаканы на 100, 200, 500 и 1000 мл; цилиндры на 50, 100,500 и 1000 мл, аналитические весы, лабораторные весы, магнитные мешалки, электрические плиты, стеклянные палочки, соли тяжелых металлов, маточные растворы среды Мурасиге – Скуга, агар-агар, дистиллированная вода, пробирки, чашки Петри,спирт, халаты,маркеры.
Ход работы.
1.Приготовить согласно прописям (табл. 2) питательную среду Мурасиге – Скуга.
2.Добавить расчетное количество солей тяжелых металлов в состав селективных питательных сред.
3. Добавить агар-агар в состав питательной среды из расчета 7 г на 1 л среды.
4.Нагреть питательные среды до расплавления агар-агара и разлить по пробиркам.
5.Закрыть пробирки ватно-марлевыми пробками и простерилизовать в автоклаве.
Расчет необходимого количества соли тяжелого металла исходя из концентрации иона тяжелого металла вычисляют по формуле
,
где Х – необходимая масса соли;
С – концентрация металла в растворе;
Мr– молекулярная масса соли тяжелого металла;
Аr – атомная масса находящегося в ней металла.
Т а б л и ц а 2. Состав среды Мурасиге – Скуга из маточных растворов
| Компоненты среды | Маточный раствор, г/л | Количество маточного раствора для приготовления 1л среды, мл |
| Макросоли, г/л: | 100 | |
| KNO3 | 19,0 | |
| NH4NO3 | 16,5 | |
| KH2PO4 | 17,0 | |
| MgSO4.7H2O | 3,7 | |
| CaCl2.H2O | 4,4 | |
| Fe-хелат, г/л: | 5 | |
| FeSO4. 7H2O | 5,57 | |
| Na2ЭДТА. 2H2O | 7,45 | |
| Микросоли, мг на 200 мл: | 10 | |
| H3BO3 | 124 | |
| MnSO4. 4H2O | 482 | |
| ZnSO | 172 | |
| KI | 16,6 | |
| Na2MoO4. 2H2O | 5,0 | |
| CuSO4 | 0,5 | |
| CoCl2. 2H2O | 0,5 | |
| Витамины, мг на 200 мл: | 10 | |
| пиридоксин HCl (В6) | 10 | |
| тиамин – HCl (В1) | 2 | |
| никотиновая кислота (РР) | 10 |
Материалы и оборудование: колбы и стаканы на 200, 500, 1000 мл, готовые питательные среды с содержанием различных концентраций солей тяжелых металлов, боксы для посева микроорганизмов, микробиологические петли, спирт, дистиллированная вода, газовая горелка, штаммы микроорганизмов, халаты, маркеры, резиновые перчатки.
Микроорганизмы бывают анаэробными и аэробными. Большинство патогенных микроорганизмов – анаэробны и способны вырабатывать токсины. Вирулентность (выживаемость) микроорганизмов зависит от внешних факторов окружающей среды и организма хозяина, в благоприятных условиях она равна 100 %. По мере изменения микроорганизмов и возникновения у них высокопатогенных признаков организм хозяина вырабатывает иммунитет к патогенным признакам – теория "ген и антиген".
Микроорганизмы способны вырабатывать токсины сами и, поглощая из питательной среды токсические вещества, могут существовать в высокоагрессивных средах. Токсические вещества микроорганизмов приводят к нарушению жизнедеятельности организма хозяина, его интоксикации (отравлению) и гибели. Если организм выживает, то он приобретает иммунитет к воздействию этих токсинов. Невосприимчивость бывает длительной (оспа) и кратковременной ( грипп). Микроорганизмы способны изменять среду обитания, делая её для себя максимально благоприятной. Например, гриб Penicillium notatum вырабатывает пенициллин – токсин, уничтожающий большинство других микроорганизмов-конкурентов или замедляющий их развитие – явление аллелопатии. Грибы Aspergilus albus и Aspergilus niger вырабатывают токсины, выделяемые ими в окружающую среду, делая её ядовитой для других организмов, при этом она остаётся приемлемой для него. Споры их могут быть токсическими для теплокровных организмов, вызывая их гибель. При жизнедеятельности на загрязненных субстратах микроорганизмы способны быстро видоизменяться, приспосабливаться к уровню токсичности среды. При этом они включают в свой метаболизм токсиканты, находящиеся в субстрате. Например, при высокой концентрации меди в субстрате некоторые микроорганизмы способны повышать концентрацию меди в спорах по сравнению с контролем до 500 раз. Развиваясь на загрязненных субстратах, зачастую, микроорганизмы способны увеличивать выработку собственных токсинов.
Микроорганизмы по способу проникновения в субстраты бывают:
а) поверхностные;
б) проникающие;
в) лизирующие (разжижающие субстрат);
г) внутрисубстратные.
Микроорганизмы способны накапливать в себе свои токсины либо выделять их в субстрат. Микроорганизмы, накапливающие в себе токсины, концентрируют их в вакуолях, эндоплазматической сети, аппаратах Гольджи, на мембранах. Способность проникновения токсинов в клетку зависит от уровня сродства к липопротеинам либо от способности разрушать мембраны клеток, при этом обычно нарушается ферментативный обмен клеток.
Ход работы.
1.Подготовить к работе ламинар-бокс и инструменты, используя 96% -ный спирт.
2.Провести стерилизацию оборудования, рук 70 %-ным спиртом.
3.С помощью микробиологической петли произвести посадку микроорганизмов на питательные среды.
4.Поместить зараженные микроорганизмами питательные среды в термостат.
5. Культивировать в течение 7–21 дня патогенные микроорганизмы при температуре 37 0 С, сапрофитные микроорганизмы – при температуре 25-27 0 С.
6.По истечении срока культивирования произвести снятие результатов эксперимента и заполнить табл. 3.
7.Сделать выводы о влиянии различных форм и концентраций солей тяжелых металлов на микроорганизмы.
Т а б л и ц а 3. Влияние токсических веществ на микроорганизмы
Признаки | Растворы солей тяжелых металлов | |||||||||||
1 | 2 | 3 | 4 | 1 | 2 | 3 | 4 | 1 | 2 | 3 | 4 | |
| 1.Степень угнетения, % | ||||||||||||
| 2.Плотность покрова | n;"> | |||||||||||
| 3.Наличие спороношения | ||||||||||||
| 4.Степень врастания в питательную среду | ||||||||||||
| 5.Наличие продуктов метаболизма | ||||||||||||
| 6.Цвет коллоний | ||||||||||||
| 7.Профиль коллоний | ||||||||||||
Работа 4. Особенности регенерации растений
in vitrо на токсинсодержащих субстратах
Материалы и оборудование: пинцеты, ножницы, спирт, стерильные матрасики, скальпель, вата, стерильные растения, пробирки со стерильными токсинсодержащими питательными средами, ламинар-бокс, газовая горелка, халаты, маркеры.
Ход работы.
1.Подготовить к работе ламинар-бокс.
2.Провести стерилизацию оборудования и инструментов 96 %-ным спиртом и рук –70 %-ным спиртом.
3. Стерильные растения пинцетом достать из пробирки и, поместив на стерильный матрасик, разрезать на части, содержащие интерколярную почку.
4.Полученные черенки высадить в пробирки с токсинсодержащей питательной средой. В качестве контроля использовать питательные среды, не содержащие токсических веществ.
5.Культивировать растения in vitro в течение 3 – 4 недель в условиях культуральной комнаты (t =24 –26 0С, влажность 70 – 80%, фотопериод 16–18 ч).
6. По истечении срока культивирования произвести описание растений in vitro и заполнить табл. 4.
7. По результатам эксперимента сделать выводы.
Т а б л и ц а 4. Влияние токсинсодержащих сред на регенерацию растений in vitro
Вариант | Вид растений | Примечание | ||||
| Степень регенерации, % | Высота растения -реге- неранта, см | Количество листьев, шт. | Колич. корней, шт. | Длина корней, см | ||
Материалы и оборудование: стеклянные лабораторные опрыски-
ватели, изоляторы, растения в горшочках, соли тяжелых металлов, спирт , резиновые перчатки, распираторы, халаты, пинцеты, зажимы, мерные цилиндры, стеклянные стаканы на 100, 200, 500 мл, дистиллированная вода, маркеры.
У растений проявляется генетически обусловленная видовая и сортовая специфика по накоплению токсикантов в продукции. Например, отмечено, что накопление кадмия у салата разных сортов различалось более чем в 300 раз. Наблюдается специфика накопления тяжёлых металлов в различных органах растений. Концентрация тяжёлых металлов уменьшается в следующем направлении: корни стебли листья
плодысемена, исключения встречаются редко. Элементы химического состава семян проявляют постоянство и находятся под сильным генетическим контролем, а соотношение химических элементов соответствует потребности проростка гетеротрофа. Отмечено, что растения имеют физиологические механизмы, делающие их толерантными к токсичности металла. Они не связаны с поглощением, но связаны с внутренней детоксикацией. Выделяют 3 основные стратегии накопления тяжелых металлов растениями в зависимости от их содержания в почве ( рис. 1,2,3).
1.Аккумуляторы – растения, у которых наблюдается накапливание тяжелых металлов в надземной части при высоком или низком их содержании в почве.
Рис.1. Аккумуляторы: Кр– концентрация тяжелых металлов в растении,
Кп – концентрация тяжелых металлов в почве.
2. Индикаторы – растения, у которых концентрация тяжелых металлов в надземной части прямо связана с их концентрацией в почве);
Рис 2. Индикаторы: Кр и Кп – то же, что и на рис.1.
3. Эксклюдеры– растения, у которых концентрация тяжёлых металлов в побегах поддерживается постоянно низкой в широком ранге почвенных концентраций до критического значения в почве.
Рис.3. Эксклюдеры: Кр и Кп –то же , что и на рис. 1.
У аккумуляторов местами детоксикации служат побеги, у эксклюдеров – корни. Абсолютные металлоденты, накапливающие металлы в себе, даже при низком содержании в почве являются аккумуляторами. А те, которые разделяются на толерантные и нетолерантные рассы, на загрязненных почвах часто ведут себя как эксклюдеры. Для каждого тяжёлого металла существует свой механизм детоксикации, и устойчивость к одному тяжёлому металлу не связана с устойчивостью к другому. Возможны следующие механизмы защиты от действия тяжёлых металлов в растениях:
1)образование сложных соединений с различными органическими веществами;
2) накопление в вакуолях;
3) удаление через клеточную стенку (мембранный транспорт).
При изучении естественных популяций частота встречаемости устойчивых растений приблизительно равна 2 шт/1000 (2%). Причиной появления их могут быть мутации, однако вследствие жёсткого давления отбора эти формы могут размножаться за 1–2 поколения. Установлена наследственность детерминирования накопления металлов для каждого экотипа.
Ход работы.
1.Растенияв горшочках поместить в пластиковые изоляторы.
2.Одеть средства защиты (резиновые перчатки, халаты, респираторы).
3.С помощью лабораторного опрыскивателя растения в изоляторах равномерно обработать растворами токсикантов.
4.Изоляторы закрыть и поместить в культуральную комнату.
5. Снять результаты через 2 недели после закладки эксперимента.
6.Результаты занести в табл. 5.
7. Сделать выводы.
Т а б л и ц а. 5. Влияние тяжелых металлов на рост и развитие растений in vivo
|
Вариант | Масса растения, г | Листья | Корни | ||||||
| Количество, шт. | Мас-са, г | Размер, см2 | % повреждений | Мас-са , г | Дли-на, см | Количество, шт. | % повреждений | ||
Материалы и оборудование: пластиковые емкости объемом 1,5–2 л, чашки Петри, линейки, весы лабораторные аналитические, фарфоровые ложки, металлические шпатели, соли тяжелых металлов, дистиллированная вода, воздушно-сухая почва, мерные цилиндры, колбы, химические стаканы, спирт, маркеры.
Ход работы.
1.В сосуды разложить по 500 г воздушно-сухой почвы. Высота ее должна быть не менее 15 см.
2.Червей отмыть, измерить их длину, определить массу и отметить их общее состояние.
3. В сосуд запустить 10 половозрелых особей дождевого червя.
4. Почву полить раствором токсиканта и тщательно перемешать.
5.Сосуд накрыть и поместить в оптимальные для жизнедеятельности дождевых червей условия (темнота, температура воздуха 13 – 18 0С ).
6.Результаты снять через 7–14 дней и занести в табл. 6.
7.Сделать выводы по результатам эксперимента.
Т а б л и ц а 6. Параметры популяции дождевых червей при наличии токсикантов
в субстрате
Ва - ри - ан- ты | Параметры популяции дождевых червей | |||||||||
| До эксперимента | После эксперимента | |||||||||
| Длина, см | Мас- са, г | Коли- чество, шт. | Цвет | Активность, % | Длина, см | Мас-са , г | Количество, шт. | Цвет | Активность, % | |
Шкала активности: 5– повышенная активность; 4– нормальная (100 % живых); 3 –удовлетворительная (ниже нормы) – единичные мертвые;
2 – пониженная (слабая) – 30 % мертвых; 1– низкая (наличие мертвых особей более 50%); 0–отсутствие живых особей.
Работа 7. Воздействие токсических веществ на теплокровные организмы
Материалы и оборудование: пинцеты, скальпели, зажимы, вата, марля, парафин, соли тяжелых металлов, спирт, эфир, хлороформ, чашки Петри, пробирки, стаканы на 100, 200, 500 мл, мерные цилиндры, шпатели, ножницы, препаровальные иглы, шприцы, халаты, резиновые перчатки, бинокуляры, осветители, пластиковые емкости на 2л, маркеры, дистиллированная вода.
Порядок проведения патологоанатомической экспертизы
теплокровных животных
1. Производится фронтальный разрез от ректальной области до ключицы (сверху вниз).
2. Откидывается кожный лоскут, производится вскрытие грудной клетки по хрящевым тканям грудины.
3. Грудная клетка раскрывается, изымаются лёгкие с трахеей, анатомируются на предмет изучения прижизненных и посмертных изменений.
4. Препарируется сердце и коронарные сосуды для выявления патологии.
5.Производится удаление диафрагмы и брюшной стенки для доступа к брюшной полости.
6. Изымается и изучается пищевод с желудком, толстый и тонкий кишечник, прямая кишка. При необходимости дополнительной экспертизы подозрительные участки органов консервируются для более подробного изучения.
7. Изучаются на предмет патологии печень, мочевыводящая система, выявляются изменения в половых органах, кровеносной системе (костный мозг, селезёнка).
8. При подозрении воздействия на нервную систему и головной мозг производится трепанация черепа. Делается предварительный круговой надрез в области височного шва черепа, откидывается кожный лоскут. Производится вскрытие черепной коробки, изучаются мягкие оболочки мозга на предмет патологии. Мозг изымается для выявления глубинных патологий. Для изъятия мозга разрезаются все нервные узлы, идущие к нему.
9. Производится вскрытие позвоночника, изъятие спинного мозга и исследование его на предмет патологии.
Ход работы.
1. Подготовить лабораторных мышей и рассадить их в пластиковые емкости.
2. Обработать корм раствором токсикантов.
3. Обнажить кожу от меха.
4. На кожу брюшной части нанести раствор экотоксиканта, через сутки обработку повторить.
5. Животным скармливать загрязненный корм в течение 7 дней.
6. По результатам проведения патологоанатомической экспертизы сделать выводы о воздействии токсических веществ на организм и заполнить табл. 7. и 8.
Т а б л и ц а 7. Воздействие экотоксикантов на теплокровные организмы
| Вариант | Изменение поведения | Изменение внешнего вида | Изменения внутренних органов | |||
| До | После | До | После | До | После | |
Т а б л и ц а 8. Видоизменения внутренних органов под воздействием
экотоксикантов
| Вариант | Сердце | Лёгкие | Желудок с кишеч- ником | Печень | Селезенка | Поло- вые органы | Головной мозг | Поч- ки |
Работа 8. Воздействие алкалоидов
НА теплокровные организмыАлкалоиды – вещества растительного происхождения, чаще всего циклические либо гетероциклические, содержащие амино - либо имино-группу, обладающие выраженным биохимическим действием на организм теплокровных и человека.
Воздействие наркотиков на теплокровных и человека. Действующее начало гашиша и марихуаны – тетрагидроканнобинол (ТГК); попадая в организм, он концентрируется в области лимбической системы, которая называется ещё мозгом внутренних органов – в ней расположены центры удовольствия. Угнетающее действие ТГК распространяется на секрецию -аминомасляной кислоты, которая выполняет в нервной системе тормозящую функцию. В высших отделах мозга тормозящие функции становятся меньшими по сравнению с простыми возбуждениями. При наркотическом отравлении усиливается приток в кору больших полушарий импульсов от чувствительных окончаний внутренних органов. В обычном состоянии большая часть этих импульсов задерживается подкорковыми структурами мозга и не воспринимается сознанием. В данном же случае обрушивающийся на мозг поток беспорядочных сигналов дезорганизует психику. Эти сигналы, переплетаясь с реальностью, приводят к возникновению галлюцинаций. Более мощный галлюциноген по сравнению с ТГК –диэтиламид лизергиновая кислота (ЛСД–25) и диметилтриптамин, к ним происходит привыкание с 2–3 приёмов. Основа их действия на лимбическую систему – сходство с медиатором серотонином. Химическое строение молекулы мескалина (получают из кактуса лофофор) близко к строению молекулы серотонина – одного из медиаторов нервной системы. Эмоциональный подъём и эйфорию способны вызвать препараты, близкие по строению к адреналину и медиатору норадреналину. Наиболее известен эфедрин и психостимулятор фенолин.
Отдельные представители алкалоидов
1. Никотин – С10Н14N2 – бесцветная, окрашивающаяся на воздухе в бурый цвет жидкость с запахом табака и едкая на вкус. Содержится в растениях и семенах табака и других паслёновых. Очень ядовит, действует на центральную и периферийную нервную систему. Применяется как инсектицид и как наружное средство в ветеринарии (против блох, клещей) ЛД100 = 50–100 мг.
2.Кониин – С8Н17N – маслянистая жидкость с резким запахом. Содержится в дурмане, белене, беладонне, вехе ядовитом. ЛД 100 = 100–150мг. Очень ядовит.
3. Атропин– С17Н23NО3 –– белые кристаллы, горькие на вкус. Содержится в различных паслёновых (белена, дурман, беладонна).ЛД100 100 мг для человека. Применяется в медицине как противоспазматическое и болеутоляющее средство.
4. Кокаин – С17Н21NО4 – белое кристаллическое вещество. Встречается в листьях кустарника кока. Используется в медицине как местное анестезирующее средство. В больших количествах– яд.
5.Хинин – С20Н24N2O2 – аморфный порошок с очень горьким вкусом. Выделен из коры хинного дерева. Используется для лечения малярии.
6. Морфин – С17Н19NO3 – главный алкалоид опия. Существует в виде кристаллического моногидрата малорастворимого в воде. Сильный яд. Используется как болеутоляющее и снотворное средство.
7.Стрихнин – С21Н22N2О2 – белые кристаллы; мало растворимы в воде, лучше в этаноле, бензоле, хлороформе. Водный раствор имеет очень горький вкус. Выделен из семян чилибухи. В больших дозах очень сильный судорожный яд. ЛД100 = 30 мг.
8.ЛСД – N,N – диэтиллизергамид – кристаллическое вещество – С10Н16N2O2, содержится в грибе спорынья, обладает сильным длительным галлюцинационным действием; применяется при лечении шизофрении.
Работа 9. Экспериментальная затравка
лабораторных мышей алкалоидами
1.Отравление атропином. Мыши вводится 0,1%-ный раствор сульфата атропина из расчёта 300 мл/кг живого веса. Достигается состояние глубокой гипотонии с нарушением тонов сердца. Проявляется отравление тремором (подёргивание конечностей), расширением зрачков, развитием судорог и паралича. После этого мыши вводят подкожно 0,4 мл 0,05%-ного раствора прозерина в область живота с противоположной стороны. Через 2–3 минуты снимается угнетение, мышечный тонус приходит в норму.
2. Экспериментальное отравление животных препаратами кокаиновой группы. Проводится инъекция в область живота лабораторной мыши из расчёта 1 мл 2%-ного раствора гидрохлорида лидокаина. Изучаются реакции животного.
Изменения в организме, вызываемые отравлениями. Яд – понятие относительное. Поваренная соль в количестве 60 – 70 г может вызвать отравление, а 300 г – смерть. При приёме внутрь дистиллированной воды наблюдается отравление, а введение ее в кровь вызывает смерть.
Ниже приведена характеристика основных ядов.Неорганические кислоты (НCl, Н2SO4). Обладают местным прижигающим действием. При соприкосновении с тканями происходит значительное местное повышение температуры, резкое обезвоживание клеток и свёртывание клеточного белка с последующим его растворением. На месте ожога образуется сухой плотный струп с омертвлением и разрушением нижележащих тканей. При введении кислот через рот прежде всего поражаются губы и подбородок, образуются темно-бурые подтёки. Подобные изменения образуются также в полости рта, пищевода, зева (между ртом и пищеводом), желудка и в верхней части тонкого кишечника.
Ртуть. Ядовитым действием обладают сама ртуть и ее пары. Появляются жгучие боли в пищеводе и желудке, рвота белыми клочьевидными массами с примесью крови, обморок, судороги и при общем упадке сил – смерть. В острых случаях смерть наблюдается через несколько часов, но иногда затягивается на 6 – 8 дней. Смертельная доза сулеймы – 0,2 –0,3 г. Пары ртути легко всасываются из лёгких в кровь, воздействуя на центральную нервную систему и головной мозг. Первичному поражению подвергается мозжечок, и, как следствие, происходит расстройство координации движений; далее поражается кора головного мозга, что вызывает кому и смерть.
Угарный газ. Вызывает явление удушья, всасываясь в кровь, приводит к денатурации гемоглобина в карбоксигемоглобин, не способный переносить кислород. Гибель наступает от нехватки кислорода в мозге.
Этиловый спирт. Бесцветная, легко испаряющаяся жидкость со специфическим запахом. Содержание 0,1% его в крови вызывает изменения в эмоциональном поведении человека, более 0,5% – опасно для жизни. Степень опьянения делится на 3 клинических периода:
1) возбуждение центральной нервной системы;
2) наркоз;
3) паралич.
Барбитураты – снотворные средства (мединал, молинал, барбитал). При приёме этих препаратов больше терапевтической дозы наступает отравление. Сон может длиться от нескольких часов до нескольких суток, кровяное давление падает, рефлексы исчезают, температура снижается, смерть наступает на вторые-третьи сутки. Смертельная доза по молиналу 5 г.
ЛИТЕРАТУРА
1. Экологическая химия / Под ред. Ф. Корте. М.: Мир, 1997.
2. Сильнодействующие ядовитые вещества и защита от них / Под ред. В.А. Владимирова. М. : Военное издательство, 1989.
3. Экотоксикология и охрана природы / Под ред. Д.А. Криволуцкого. М.: Наука, 1988.
4. И в а н о в А.Т., П е т р о в а В.С. , К е н и г с б е р г Я.Э. Ветеринарная токсикология
Мн. : Ураджай, 1988.
5.Б о в а А.А. , Г о р о х о в С.С., Я б л о н с к и й В. Н. Военная токсикология и токсикология экстремальных ситуаций. Минск, 1997.
6. Гигиена окружающей среды / Под ред. Г.И. Сидоренко. М.: Медицина, 1985.
7. З а х а р е н к о М. П. и др. Современные проблемы экогигиены. Киев: Хрещатик, 1993.
СОДЕРЖАНИЕ
Работа 1.Водействие тяжелых металлов на клетки растений. . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . 3
Работа 2.Приготовление селективных питательных сред для выявления
индивидуальных реакций организмов на токсиканты . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .6
Работа 3.Влияние токсических веществ на микроорганизмы. Токсины
микроорганизмов . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .7
Работа 4.Особенности регенерации растений in vitro на токсинсодержащих
субстратах. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . .. . . . . . . . . . .. . 9
Работа 5. Морфологические особенности воздействия токсикантов на растения
in vivo. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10
Работа 6.Динамика популяции дождевых червей при содержании токсических
веществ субстрате. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ... . . . . .. . . . . .. . . . .. . . . . . 13
Работа. 7.Воздействие токсических веществ на теплокровные организмы. . . .. . . . . .14 Работа 8. Воздействие алкалоидов на теплокровные организмы. . . . . . . . . . . .. .. . . . . 15
Работа 9.Экспериментальная затравка лабораторных мышей алкалоидами . . . . .. . . . .17
.
СОДЕРЖАНИЕ
Работа 1.Водействие тяжелых металлов на клетки растений.. . . . . . . . . .. . . . . 3
Работа 2.Приготовление селективных питательных сред для выявления
индивидуальных реакций организмов на токсиканты . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .6
Работа 3.Влияние токсических веществ на микроорганизмы. Токсины микроорганизмов . . .7
Работа 4.Особенности регенерации растений in vitro на токсинсодержащих
субстратах. . . . . . . . 9
Работа . Морфологические особенности воздействия токсикантов
на растения in vivo. . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . .. . . .. . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . 10
Работа 6.Динамика популяции дождевых червей при содержании токсических веществ
в субстрате. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. .. . . . . . . .. . . . . .13
Работа. 7.Воздействие токсических веществ на теплокровные организмы. . . . . . . . . . . . . 14
Работа 8. Воздействие алкалоидов на теплокровные организмы. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15
Работа 9.Экспериментальная затравка лабораторных мышей алкалоидами . . . . . . . . . . . . .17
23